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Accueil > Systèmes d’observations > Observer la dynamique d’organismes modèles 2/2 > Observer la circulation d’agents infectieux dans les populations d’oiseaux sauvages, cas du Goéland leucophée en Méditerranée

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Le programme Circulation d’agents infectieux dans les populations de Goélands leucophée vise à étudier de façon pérenne la circulation d’agents infectieux dans les populations sauvages d’une espèce d’oiseau fortement inféodée aux activités humaines, le Goéland leucophée Larus michalellis, en zone méditerranéenne. Les espèces de la famille des Laridés, dont le Goéland leucophée fait partie, sont connues pour être les hôtes naturels de virus de l’Influenza Aviaire (Olsen et al. 2006). Cette espèce, aux mœurs de prédateur et charognard, se nourrissant notamment sur de déchets alimentaires, est de plus connue pour être exposée à des agents infectieux partagés avec les populations humaines (agents de zoonoses), tel que des Salmonelles, Campylobacter et Escherichia coli (Bonnedahl et al. 2009 Ramos et al. 2010).
Ce programme a pour objectif de mieux identifier les facteurs affectant la circulation de différents agents infectieux. Les distributions des individus présentant des anticorps dans leurs œufs permettront notamment de déterminer s’il existe une structuration spatiale, intra- et inter-colonies, dans l’exposition des individus aux agents infectieux. Celle-ci pourra être mise en relation avec les ressources alimentaires exploitées par les individus, notamment leur alimentation sur des décharges (Duhem et al. 2005, Ramos et al. 2009). Les données pourront de plus nous renseigner indirectement sur les mouvements d’individus (dispersion) entre colonies.

Principe du programme et objectifs

Le principe du programme est de récolter des données sur la circulation d’agents infectieux dans des populations sauvages d’oiseaux en explorant le répertoire d’anticorps circulant chez des individus échantillonnés afin de déterminer à quels agents infectieux ils ont été exposés dans leur passé.
Il est possible de quantifier les anticorps circulant dans le sang d’un individu en analysant un échantillon de plasma obtenu suite à une prise de sang effectuée à l’occasion d’une capture (qui est aussi l’occasion de poser des bagues permettant leur identification ultérieure). Un autre moyen, ne nécessitant pas la capture des oiseaux, est d’effectuer le même type d’analyse à partir d’œuf échantillonnés sur les colonies de reproduction (Boulinier & Staszewki 2008). La femelle transfert en effet des anticorps (IgY) dans le jaune de ses œufs en proportion de la concentration qui circule dans son plasma (Gasparini et al. 2002).

Chez une espèce tel que le Goéland leucophée, c’est cette deuxième approche qui est utilisée dans le cadre de ce programme. L’échantillonnage des œufs sur les colonies en début de période d’incubation permet une bonne standardisation des données et la mise en place d’un suivi spatialisé à grande échelle. Au sein des colonies, 1 œuf par nid est collecté pour un sous-échantillon des nids (la plupart des pontes de Goéland leucophée sont de trois oeufs).

Les analyses immunologiques réalisées (ELISA) permettent de quantifier l’exposition des individus à des agents infectieux spécifiques. Parmi les agents infectieux susceptibles de circuler, il sera notamment recherché des anticorps contre les virus de l’Influenza Aviaire, le virus West Nile et des Salmonelles.


Goéland leucophée


Colonies de Goélands leucophée échantillonnées en 2009. (Pearce-Duvet et al., non publié).

Conduite du programme

Les premiers échantillons pour le programme ont été acquis en 2008 (Pearce-Duvet et al. 2009) et un échantillonnage géographique large (8 colonies en France, 3 en Espagne, 1 en Algérie, 2 en Tunisie ; Figure 1) a été conduit lors de la saison 2009. En 2010, l’échantillonnage a été étendu à plusieurs autres colonies. Les analyses sont en cours, sachant que la quantification de la proportion de femelles transmettant des anticorps dans leurs œufs nécessite une validation pour chaque anticorps recherché par l’analyse spécifique d’échantillons collectés dans un échantillon de femelles et de leur œuf.
Le programme a été mis en place dans le cadre d’un projet soutenu par l’AIRD sur la circulation des virus de l’influenza aviaire dans l’environnement (responsable : Dr Michel Gauthier-Clerc) et il constitue l’un des axes du future programme ANR ‘EVEMATA’ sur l’écologie évolutive du transfert maternel d’anticorps (responsable : Thierry Boulinier). Au Centre d’Ecologie Fonctionnelle et Evolutive, Audrey Arnal effectue une thèse de doctorat à l’Université Montpellier 2 (financement CNRS), encadrée par Thierry Boulinier (CEFE-CNRS UMR 5175, Montpellier) et Michel Gauthier-Clerc (Station Biologique de la Tour du Valat, Le Sambuc). Au niveau international, le programme implique notamment des collaborations avec Jacob Gonzalez-Solis (Université de Barcelone, Espagne) et Slaheddine Selmi (Faculté des Sciences de Gabès, Tunisie).

Références bibliographiques

Bonnedahl, J., Drobni, M., Gauthier-Clerc, M., Hernandez, J., Granholm, S., Kayser, Y., Melhus, A., Kahlmeter, G., Waldenstrom, J., Johansson, A. & Olsen, B. 2009. Dissemination of Escherichia coli with CTX-M Type ESBL between Humans and Yellow-Legged Gulls in the South of France. PLOS One e5958.

Boulinier, T. & Staszewski, V. 2008. Maternal transfer of antibodies : raising immuno-ecology issues ? Trends in Ecology and Evolution 23 : 282-288.

Duhem, C., Vidal, E., Roche, P. & Legrand, J. 2005. How is the diet of Yellow-legged gull chicks influenced by parents’ accessibility to landfills ? Waterbirds 28 : 46-52.

Gasparini, J., McCoy, K.D., Tveraa, T. & Boulinier, T. 2002. Related concentrations of specific immunoglobulins against the Lyme disease agent Borrelia burgdorferi sensu lato in eggs, young and adults of the kittiwake (Rissa tridactyla). Ecology Letters 5 : 519-524.

Olsen, B., Munster, V.J., Wallensten, A., Waldenstrom, J., Osterhaus, A. & Fouchier, R.A.M. 2006. Global patterns of influenza A virus in wild birds. Science 312 : 384-388.

Pearce-Duvet, J., Jourdain, E., Gauthier-Clerc, M. & Boulinier, T. 2009. Maternal antibody transfer in Yellow-legged gulls. Emerging Infectious Diseases 15 : 1147-1149.

Ramos, R, Ramirez, F., Sanpera, C., Jover, L. & Ruiz, X. 2009. Diet of Yellow-legged Gull (Larus michahellis) chicks along the Spanish Western Mediterranean coast : the relevance of refuse dumps. Journal of Ornithology 150:265–272.

Ramos, R., Cerdà-Cuéllar, M., Ramírez, F., Jover, L. & Ruiz, X. 2010.
The influence of refuse tips exploitation in the prevalence of Campylobacter spp. and Salmonella serovars in seagulls. Applied and Environmental Microbiology 76 : 3052-3056.

Données

DONNEES QUANTITATIVES : PROPORTION DE NIDS CONTENANT DES ANTICORPS CONTRE DIFFERENTS AGENTS INFECTIEUX POUR > 10 SITES ECHANTILLONNES CHAQUE ANNEE : ANTICORPS ANTI-INFLUENZA, ANTICORPS ANTI-SALMONELLA
(Données brutes : taux en anticorps de chaque œuf, taille de l’œuf, nombre d’œuf du nid, date de collecte).

MISE A DISPOSITION DES DONNEES APRES (1) VALIDATION et (2) PERIODE PERMETTANT LEUR EXPLOITATION DANS LE CADRE D’UN DOCTORAT EN COURS (2 ans après la collecte des échantillons). A LA FIN DU DOCTORAT, CES PERIODES CONTRAINTES POURRONT ETRE LEVEES EN FONCTION DES RESULTATS OBTENUS (et des moyens disponibles pour l’échantillonnage et les analyses).

EXEMPLE DE DONNEES : CARTE AVEC OVOPREVALENCES / TABLEAU AVEC NOM DES COLONIES, tailles d’échantillons, ovoprévalences

Publications relatives aux données

Pearce-Duvet, J., Jourdain, E., Gauthier-Clerc, M. & Boulinier, T. 2009. Maternal antibody transfer in Yellow-legged gulls. Emerging Infectious Diseases 15 : 1147-1149.